Т.В. Олива, Г.И. Горшков
Белгородская государственная сельскохозяйственная академия им. В.Я.Горина
Введение
Известно, что у нормально развивающихся эмбрионов птиц желудочно-кишечный тракт свободен от микроорганизмов. Его заселение микрофлорой начинается с момента наклева цыпленком скорлупы яйца, в которой он развивался, и общения с внешней средой. В естественных условиях в этом участвуют микрофлора ротовой полости при научении наседкой цыпленка распознавать и принимать корм, а также находящиеся в окружающей среде фекальные микроорганизмы здоровой птицы, с которой он соприкасается. В условиях инкубатора первичный контакт происходит со стерильной средой, если тщательно проведена дезинфекция яиц и оборудования, или с искусственно сформировавшимся непрогнозируемым микробным составом, загрязняющим оборудование и помещения, нередко контаминированные патогенными штаммами. По данным В.М. Субботина [1, 2], в первые 5 суток наиболее активно заселяют кишечник эшерихии и энтерококки (высеваются соответственно из 100 и 90% проб). Лакто- и бифидобактерии к концу первых суток обнаруживаются в кишечнике соответственно у 40 и 20% цыплят. К 10-м суткам они есть у всех особей и в последующие сроки продолжают увеличиваться в своей численности. Стабилизация микробиоценоза устанавливается к 15-20 суткам, что зависит не столько от численности привнесенных полезных видов бактерий сколько от их колонизационных свойств [2]. По нашим данным [3] и данным ряда авторов [4, 5], к 34-42- суточному возрасту завершается направленное формирование бактериоценоза кишечника здоровой птицы. Сформированная полезная микрофлора обычно вытесняет патогенные и условно-патогенные микроорганизмы, предотвращает возникновение и развитие эндогенной инфекции. Хорошо выражены свойства адгезии к кишечному эпителию у грамотрицательных бактерий - Escherichia coli, Klebsiella, энтерококки, но среди них есть и патогенные штаммы. Поэтому на перспективу стоит задача создания в кишечнике цыпленка уже с первых дней жизни таких условий, которые были бы благоприятны для развития нормальной полезной микрофлоры с наивысшими колонизационными способностями и сдерживали бы рост и развитие нежелательных видов. Такое направление исследований получило название конкурентного исключения (КИ). Так, в кишечник односуточного цыпленка вводили содержимое клоаки здоровой птицы, и у него формировался нормальный микробиоценоз, способствующий развитию иммунитета по типу взрослого организма. Было установлено, что продукты КИ должны применяться не позднее первых 24 часов после выведения из яйца. Однако эти исследования единичны и не позволяют существенным образом и надежно корректировать заселение микроорганизмами пищеварительного тракта цыплят-бройлеров в первые и последующие дни их жизни, поэтому дальнейший поиск способов и средств создания условий для КИ представляет научный интерес.
Цель настоящей работы - изучить бактериальную адгезию к кишечному эпителию и формирование состава микробиоценоза в разных отделах пищеварительного канала при выпаивании цыплятам в первую неделю жизни пребиотика лактулозы с тем, чтобы определить возможность его использования для стимуляции развития собственной полезной кишечной микрофлоры и вытеснения из микробиоценоза нежелательных видов.
Материалы и методы
Исследование проведено на базе лаборатории птицеводства ФГБОУ ВПО БелГСХА им.
В.Я. Горина. Из цыплят-бройлеров кросса Hubbard ISA были сформированы две группы (контрольная и опытная), по 10 голов в каждой. Опытной группе, находящейся на том же рационе, что и контрольная, выпаивали пребиотический препарат Лактусан российской фирмы «Фелицата», представляющий собой концентрат лактулозы (дисахарид - галактоза+фруктоза). Концентрация водного раствора лактулозы (1 мл/л) была подобрана с учетом нормального функционирования кишечника и с целью стимуляции роста находящейся в пищеварительном канале цыплят полезной микрофлоры.
На третьи и седьмые сутки от начала опыта из каждой группы отбирали по 3 цыпленка для патолого-морфологических и микробиологических исследований. В асептических условиях отбирали зоб, участок толстого кишечника с двумя слепыми отростками и прямой кишкой. Их содержимое (точную навеску) тщательно растирали с изотоническим раствором натрия хлорида и согласно методическим рекомендациям [6] готовили последующие десятикратные разведения (10-1;10-2;10-3;10-4; 10-5; 10-6;10-7). Для выделения и
культивирования бактерий производили посевы исследуемого материала на питательные среды: для энтеробактерий - на висмут-сульфитный агар, агар Эндо, среды Плоскирева, Симмонса и Левина; для энтерококков - на желточно-солевой агар; для гемолизирующих форм - на 5%-ный кровяной агар; для дрожжеподобных грибов - на агар Сабуро. По E. coli проводили скрининг гемолитических, лактозонегативных и со сниженной ферментативной активностью форм. Для культивирования лакто- и бифидобактерий использовали питательную среду (рН=6.8) следующего состава: 30.0 г панкреатического гидролизата казеина, 5.0 г экстракта пекарских дрожжей, 7.5 г глюкозы, 2.5 г лактозы, 0.5 г цистеина, 2.5 г натрия хлорида, 0.5 г магния сульфата семиводного, 0.5 г кислоты аскорбиновой, 0.3 г натрия ацетата трехводного, 0.75 г агара. Число колоний определяли после трехсуточной инкубации посевов при температуре 37°С. Из колоний готовили мазки и окрашивали их по Граму. Также готовили мазки-отпечатки слизистой оболочки зоба, слепого отростка и прямой кишки. После высушивания их окрашивали по Граму и исследовали под микроскопом при иммерсионной системе [7]. Микроскопия окрашенных мазков-отпечатков позволяла выявить не только наличие, но и ориентировочно оценить адгезию молочнокислых бактерий на эпителиальных клетках слизистой оболочки. Условно выделяли три степени обсемененности слизистых оболочек: слабую - до 20 микробных тел; среднюю - от 20 до 40 микробных тел; высокую - более 40 микробных тел в поле зрения. При статистическом анализе достоверность разницы между сравниваемыми величинами числа выросших колоний определяли по аргументу Стьюдента (td). Разница считалась достоверной при р<0.05 с последующей градацией до р<0.001. Полученный результат КОЕ переводили в десятичный логарифм числа.
Результаты исследований
На вскрытии грудной и брюшной полостей цыплят-бройлеров каких-либо визуальных патологических изменений не обнаружено.
При микроскопическом анализе бактериального пейзажа пищеварительного канала трехсуточных цыплят-бройлеров установлено, что колонизация толстого кишечника произошла тремя основными группами микроорганизмов - лактобактериями, бифидобактериями и бактериями группы кишечной палочки (табл. 1).
Таблица 1
Микробный пейзаж пищеварительного канала трехсуточных цыплят, lg КОЕ/г
| Г руппы бактерий | Контрольная группа | Опытная группа |
| 1 | 2 | 3 |
| в зобе | ||
| Лактобактерии | 1.20±0.08 | 1.21±0.05 |
| Бифидобактерии | не выявлены | не выявлены |
| Бактерии группы кишечной палочки | не выявлены | не выявлены |
| Стафилококки | 0.48±0.01 | 0.48±0.01 |
| Энтерококки | не выявлены | не выявлены |
| Дрожжеподобные грибы | не выявлены | не выявлены |
| Патогенные энтеробактерии | не выявлены | не выявлены |
| в слепых кишках | ||
| Лактобактерии | 4.12±0.3б | 3.91±0.73 |
| Бифидобактерии | 6.57±0.45 | 6.73±0.25 |
Окончание табл. 1
| 1 | 2 | 3 |
| Бактерии группы кишечной палочки | не выявлены | не выявлены |
| Энтерококки | не выявлены | не выявлены |
| Дрожжеподобные грибы | не выявлены | не выявлены |
| Патогенные энтеробактерии | не выявлены | не выявлены |
| в прямой кишке | ||
| Лактобактерии | 5.55±0.05 | 5.60±0.81 |
| Бифидобактерии | 5.42±0.08 | 5.48±0.18 |
| Бактерии группы кишечной палочки, в т.ч. | 6.82±0.22 | 5.67±0.11** |
| гемолитически активные формы | 4.01±0.01 | не выявлены |
| лактозонегативные формы | 5.64±0.34 | не выявлены |
| Стафилококки | единичные | единичные |
| Энтерококки | 3.85±0.10 | 2.78±0.01** |
| Дрожжеподобные грибы | 2.90±0.03 | 2.01±0.01 *** |
| Патогенные энтеробактерии | не выявлены | не выявлены |
Примечание: степень достоверности разницы с контролем: ** р<0.01; *** р<0.001
Просветная микрофлора зоба трехсуточных цыплят была представлена незначительным количеством лактобактерий и стафилококков. Выпаивание в опытной группе птицы пребиотика с лактулозой увеличивало в прямой кишке интенсивность колонизации лактобактериями на 13%, бифидобактериями - на 11.5% по сравнению с контрольной группой, не получавшей Лактусан. В то же время наибольшее количество бактерий группы кишечной палочки было в содержимом кишечника контрольной группы птиц. Дополнительным высевом культуры из 10-5 разведения на кровяном агаре и среде Эндо содержимого прямой кишки цыплят контрольной группы выявлены гемолитические и лактозонегативные формы, которые по численности составили 6.6% от общего количества бактерий группы кишечной палочки. В содержимом кишечника у цыплят, получавших лактулозу, гемолитические и лактозонегативные бактерии не выявлены. На третьи сутки развития птиц наблюдалось также достаточно интенсивное заселение отделов прямой кишки энтерококками (в основном Str. faecalis и Str. faecium). В содержимом кишечника контрольной группы гемолитических форм оказалось больше, чем в 10 раз по сравнению с содержимым кишки опытных птиц. В прямой кишке обеих групп были обнаружены дрожжеподобные грибы рода Candida. При этом установлено, что лактулоза снижает интенсивность заселения кишки дрожжеподобными грибами в 8 раз. Численность стафилококков в содержимом кишки обеих групп по сравнению со всеми изученными представителями кишечного биоценоза была наименьшей и практически приближалась к нулю.