Смекни!
smekni.com

Научно-методический центр пищевых инфекций методы частной бактериологии (стр. 50 из 55)

Кроме больных птиц, может быть изолирован из лимфатических узлов и пораженных тканей крупного рогатого скота, свиней и других животных. В эксперименте при внутривенном заражении кур обус­ловливает заболевание с летальным исходом в течение месяца, реже позднее. На вскрытии у павших кур обнаруживают очаги в печени и селезенке. У зараженных внутривенно кроликов развивается септи­ческий процесс, и они гибнут на 11-30-е сутки. После подкожного заражения у морских свинок наблюдают изменения (абсцесс) на мес­те инъекции.

В соответствии с «Наставлением по диагностике туберкулеза жи­вотных» (1986) бактериологическое исследование предусматривает микроскопическое исследование препаратов, окрашенных по мето­ду Циля-Нельсена, люминесцентную микроскопию, выделение куль­туры посевом материала на стерильные питательные среды (Петраньяни, Гельберга, Левенштейна-Иенсена). Выделенные культуры иден­тифицируют с учетом скорости появления первичного роста, культурально-морфо­ло­ги­ческих и тинкториальных свойств, способности к росту при различных температурных режимах (20-25, 37-38, 45°С) на разных питательных средах (яичные, яичные с салицилатом натрия, МПБ). Проводят биопробу с целью обнаружения возбудителя в испы­туемом материале или определения видовой принадлежности выделен­ной культуры микобактерий. Вид подопытного животного определяет­ся целью исследования (морские свинки, куры, кролики).

Мycobacterium paratuberculosis

Возбудитель паратуберкулеза. Болеют круп­ный рогатый скот, овцы, козы и другие виды домашних и диких живот­ных. Клетки палочковидной формы, размером 0,6-2,0 ´ 0,2-0,5 мкм, окрашиваются равномерно, однако в удлиненных клетках могут на­блюдаться неоднородные по тинкториальным свойствам участки. В старых культурах возможно наличие кокковидных или удлиненных форм. В мазках из патологического материала характерно расположение кле­ток кучками, в виде «палисада».

Культивирование затруднительно. Поэтому в питательные среды добавляют, особенно при первичной изоляции, ростовой фактор — микобактин (0,03 мкг/мл). Остальные микобактерии продуциру­ют его самостоятельно. Препарат микобактина можно заменить экст­рактами из микобактерий других видов, которые вносят в питатель­ную среду в количестве 1-4%. Наибольшее количество ростового фак­тора содержится в экстрактах из М. phlei (Twort, Ingram, 1913).

Аэроб, температурный оптимум 38°С. В жидких питательных средах растет с образованием нежной, беловатой пленки (через 3-4 месяца культивирования становится толще и опускается на дно пробирки). На плотных питательных средах макроскопически видимый рост появляется через 1,5-2 месяца. Колонии сухие, сморщенные, беловато-се­рого или желтого цвета

Мycobacterium intracellulare

Изолируют при ограниченных поражениях у сви­ней, крупного рогатого скота и туберкулезоподобной патологии у людей.

Наряду с перечисленными видами в природе обитают микобак­терии, не вызывающие патологию у животных, но способные сенси­билизировать организм и обусловливать положительные реакции на туберкулин. К этой группе микобактерии относятся следующие ви­ды: M.xenopi, M.ulcerans, М. haemophilum, М. farcinogenes, М. malmoense, М. asiaticum, М. gordone, М. szulgai, М. shimoidei, М. simiae, М. serofuiaceum, М. microti, М. kansassii, М. nonchromogenicum и др.

Питательные среды для культивирования патогенных микобактерий

Среда Петраньяни. В стерильную колбу со стеклянными шарика­ми вносят 250 мл свежего цельного молока, 6 г картофельной му­ки, 1 г пептона, одну мелко нарезанную картофелину размером с ку­риное яйцо. Помешивая, выдерживают колбу с содержимым в кипя­щей водяной бане 10 минут, охлаждают до 60°С и вносят один желток и содержимое 4 свежих куриных яиц, 12 мл стерильного глицерина, 6 мл 2%-ного (на дистиллированной воде) раствора малахитового зеленого. Компоненты перемешивают, фильтруют через двойной слои марли, разливают по стерильным пробиркам и свертывают в наклон­ном положении в аппарате Коха при 85°С 30 минут. В последующие двое суток прогревают при 75°С по 15 минут. Готовая среда светло-зеленого цвета. Хранят на холоде.

Среда Левенштейна-Иеисена. Готовят солевой раствор следую­щего состава. В 600 мл дистиллированной воды растворяют перво­начально 2,4 г одноосновного фосфата калия, далее последователь­но 0,24 г сульфата магнезии, 0,6 г цитрата магнезии, 3,6 г L-аспарагина, 12 г химически чистого глицерина. Раствор стерилизуют текучим паром 120 минут, добавляют 30 г картофельного крахмала, разливают в колбы по 150 мл и нагревают в кипящей водяной бане до загустения смеси.

Затем готовят яичную массу. В литровую стерильную колбу с бу­сами асептично вносят содержимое 20-22 куриных яиц (свежих), пе­ремешивают, фильтруют через марлю. К 1000 мл яичной смеси до­бавляют 20 мл стерильного 2%-ного раствора малахитового зелено­го и перемешивают.

К 1 л яичной смеси с малахитовым зеленым добавляют 600 мл солевого раствора с крахмалом, выдерживают около одного часа до исчезновения пузырьков, асептично разливают по 8-10 мл в про­бирки и в скошенном положении в аппарате Коха прогревают при 80-85°С 40 минут. Далее выдерживают в термостате для контроля стериль­ности. Хранят на холоде. Если среду используют для определения ле­карственной устойчивости микроорганизмов, крахмал не добавляют.

Яичная среда Гельберга. Пять свежих куриных яиц моют, обтира­ют спиртом, слегка обжигают, вскрывают. Асептично извлекают два желтка и помещают их в стерильную колбу с бусами, встряхивают. Добавляют 50 мл солевого раствора, 50 мл молока, 50 мл кар­тофельного отвара, 2,5 мл 10%-ного стерильного раствора лимон­ной кислоты. Компоненты перемешивают, добавляют 3,5 мл 2%-ного раствора малахитового зеленого и вновь содержимое колбы тщатель­но перемешивают. Смесь фильтруют через стерильную марлю и по 4-6 мл разливают в пробирки. Стерилизуют в аппарате Коха при 85°С 60 минут однократно. Готовую питательную среду для контроля стериль­ности выдерживают 48 ч в термостате. Используют в течение недели после изготовления при хранении на холоде.

Приготовление картофельного отвара. Очищенный и нарезанный картофель заливают двойным (по весу) количеством воды, кипятят 15 минут, отстаивают, фильтруют через ватно-марлевый фильтр, разливают в колбы по 110 мл и стерилизуют при 120°С 20 минут.

Приготовление молока. Снятое коровье молоко раз­ливают по 110 мл в колбы, стерилизуют первый день при 105°С 10 минут и второй — 15 минут текучим паром.

2%-ный раствор малахитового зеленого стерилизуют при 120°С 20 минут. 10 г кристаллической лимонной кислоты растворяют в 100 мл дистиллированной воды, разливают по 10 мл в пробирки и стерили­зуют 20 минут при 120°С.

Приготовление солевого раствора. Берут К2НРO4 — 1 г, натрия лимоннокислого — 1 г, магнезии сернокислой — 1 г, пептона — 6 г, глицерина химически чистого — 30 мл, воды дис­тиллированной — до 1000 мл. Каждый компонент растворяют в не­большом количестве воды, потом вносят глицерин и добавляют дис­тиллированную воду до 1000 мл. Смесь слегка подогревают, фильтру­ют через бумажный фильтр, разливают в колбы по 110 мл и стерилизу­ют 20 минут при 105°С.

Картофель Павловского. Белый картофель тщательно моют с мы­лом, насухо вытирают, очищают, прокаленным ножом срезают оба полюса картофелины. Специальным стерильным бором вырезают из картофеля цилиндры длиной 5—6 см, шириной в соответствии с диа­метром пробирки. Цилиндры по диагонали разрезают на два клина и опускают последние в 5%-ную стерильную глицериновую воду на 1-2 ч. Далее клинья подсушивают при помощи стерильной фильтро­вальной бумаги и пинцетом опускают в пробирки Ру с перетяжкой, содержащие в нижней части 5%-ную стерильную глицериновую воду (рН 7,0-7,2), с расчетом, чтобы нижняя часть картофельного клина касалась жидкости. Пробирки стерилизуют при 110°С 10 минут. Сразу после стерилизации пробирки размещают в наклонном положении поверхностью посевов вниз, что позволяет сохранить их влажными. Стерильность контролируют выдерживанием пробирки в термостате в вертикальном положении двое суток. Хранят на холоде.

Среда Петрова. Приготавливают компоненты. Смешивают 500 г мясного говяжьего фарша с 500 мл 15%-ной глицериновой воды и выдерживают 24 ч на холоде. Перед употреблением фильтруют.

Асептически извлекают содержимое куриных яиц, помещают в мерный цилиндр и перемешивают. Далее готовят 1%-ный спиртовой раствор генцианвиолета и выдерживают 24 ч в термостате. Для изготовления среды в 1 часть мясного настоя вносят 2 час­ти яичной смеси и 1 мл раствора генцианвиолета на каждые 100 мл среды. Компоненты тщательно перемешивают, разливают по пробир­кам и прогревают первый день при 85°С, а два последующих дня — при 75°С по 45-60 минут. Готовую среду контролируют на стерильность, выдерживая в термостате 3-5 дней.

Яично-картофельная среда Виноградова. Вымытый, очищенный и нарезанный мелкими кусочками картофель заливают водой (1:2) и варят при 120°С 1,5 ч. Горячий отвар фильтруют через марлю. В фильтрат вносят 1% пептона, 0,5% натрия хлорида, 5% глицерина. Смесь стерилизуют в автоклаве и используют по мере необходимос­ти. При изготовлении среды к 1 части картофельного отвара добавля­ют 2 части яичной смеси, перемешивают, разливают по пробиркам и прогревают при 90°С. Затем в каждую пробирку вносят 0,5-1,0 мл МПБ с глицерином или картофельного отвара и повторно стерилизу­ют при 100°С два дня по 45 минут.

Среда Дорсе. Вымытые куриные яйца помещают на 10-15 минут в сосуд с этиловым спиртом, затем обжигают на пламени горелки, со­держимое асептично переносят в колбу с известным весом и долива­ют 10% (вес/вес) дистиллированной воды. Смесь тщательно переме­шивают, фильтруют через стерильную марлю, разливают по пробир­кам и свертывают в наклонном положении при 70-75°С 60 минут. Конт­ролируют на стерильность, выдерживая 3 суток в термостате.