22. Скабичевский, А. П. Планктонные диатомовые водоросли пресных вод СССР / А. П. Скабичевский. — М. : Высш. школа, 1960. — 320 с.
23. Солдатенкова, Ю. П. Малый практикум по ботанике. Лишайники / Ю. П. Солдатенкова. — М. : Изд-во МГУ, 1977. — 89 с.
24. Сулига, Е. М. Ксилотрофы западной зоны Саратовской области / Е. М. Сулига, Д. В. Иванов // Состояние биосферы и здоровье людей. — Пенза : ПГСХА. 2002. — С. 193—197.
25. Сулига, Е. М. Лишайники как биоиндикаторы загрязнения воздуха в городе Балашове / Е. М. Сулига, М. А. Занина // Проблемы биологии, экологии, географии, образования: история и современность : матер. Второй междунар. науч.-практич. конф. — СПб. : ЛГУ им. Пушкина, 2008. — С. 234—236.
26. Сулига, Е. М. Фитопланктон малых водоемов в урбанизированной среде
г. Балашова / Е. М. Сулига // Социально-экологические проблемы малого города : матер. Всерос. науч.-практич. конф. —Балашов, 2008. — С. 185—188.
27. Яковлев, Г. П. Ботаника : учебник для вузов / Г. П. Яковлев, В. А. Челомбитько ; под ред. Камелина. — СПб. : СПХФА, 2003. — 647 с.
Список дополнительной литературы
28. Горышина, Т. К. Экология растений / Т. К. Горышина. — М. : Высш. шк., 1979. — 256 с.
29. Гуленкова, М. А. Летняя полевая практика по ботанике / М. А. Гуленкова, А. А. Красникова. — М. : Просвещение, 1964. —156 с.
30. Гуревич, А. А. Пресноводные водоросли: Определитель / А. А. Гуревич. — М. : Высш. шк., 1966. —110 с.
31. Жизнь растений / под ред. А. Л. Тахтаджяна. М. : Просвещение, 1974—1982. Т. 1—3.
32. Рейн, П. Современная ботаника / П. Рейн, Р. Эверт, С. Айкхорн. — М. : Просвещение, 1997. — 336 с.
33. Хржановский, В. Г. Практикум по курсу общей ботанике : учеб. пособие / В. Г. Хржановский, С. Ф. Пономарева. — М. : Высш. шк., 1979. — 422.
34. Шапиро, Я. С. Микроорганизмы: вирусы, бактерии, грибы : учеб. пособие / Я. С. Шапиро. — СПб. : ЭЛБИ-СПб, 2003. — 323 с.
35. Яковлев, Г. П. Ботаника для учителя / Г. П. Яковлев, Л. В. Аверьянов. — М. : Просвещение, 1997. — 336 с.
Приложение 1
Рекомендации по изготовлению временных микропрепаратов
и выполнению биологического рисунка
Правила приготовления микропрепаратов
Для приготовления временных микропрепаратов необходимо иметь набор предметных и покровных стекол, препаровальные иглы, лезвия бритвы, скальпели, стеклянные палочки для воды, пипетки, пинцеты, фильтровальную бумагу, некоторые реактивы, бинокулярные лупы, микроскопы.
Предметное и покровное стекла промывают водой и протирают досуха салфеткой из мягкой ткани. Тонкий срез растительного объекта помещают в каплю воды на предметное стекло и накрывают покровным стеклом. Если жидкость на препарате выступает за края покровного стекла, то излишек ее удаляют полосками фильтровальной бумаги. Когда вода не покрывает всю площадь под покровным стеклом, пипеткой наносят близ края покровного стекла еще каплю, которая сама втягивается под стекло.
Для изучения живых клеток применяют метод висячей и раздавленной капли. Последний заключается в прижимании покровного стекла к предметному и удалении избытка воды фильтровальной бумагой.
Масса, зафиксированная на предметном стекле, получила название мазка. На обезжиренное предметное стекло наносят каплю с изучаемым объектом и размазывают покровным и фиксируют высушиванием.
При необходимости введения какого-либо красящего реактива воду из-под покровного стекла удаляют с помощью фильтровальной бумаги, а капельку реактива наносят с противоположной стороны в край покровного стекла.
Реактивы, используемые в работе:
1) анилиновый синий в молочной кислоте. 0,1 г анилинового синего растворяют в 100 мл воды, добавляют 50 мл молочной кислоты. Употребляется для выявления мицелия в тканях растений;
2) глицерин используется для просветления препарата;
3) едкая щелочь (КОН) используется в виде 5—10%-х водных растворов. Используется как средство, способствующее набуханию высохших оболочек (споры грибов) и просветляющее препараты;
4) иммерсионное масло представляет собой очищенное и сгущенное кедровое масло. Применяется для рассмотрения препаратов с объективом ×90. Каплю масла помещают между объективом и покровным стеклом микропрепарата;
5) йод употребляется обычно в виде раствора Люголя (1 г кристаллического йода, 2 г йодистого калия и 300 мл воды). Вначале готовят раствор йодистого калия в воде и вносят навеску йода. Служит для окрашивания зерен крахмала
и гликогена в клетках;
6) медный купорос (СuSO4) используется для приготовления фелинговой жидкости и при получении абсолютного спирта;
7) «Судан III» окрашивает жиры, смолы, эфирные масла в красный цвет. Раствор красителя всегда должен быть свежеприготовленным: 0,1 г «Судана III»
растворяется в 20 мл 95%-го спирта, после чего к раствору добавляется 20 мл глицерина.
Техника приготовления временных микропрепаратов
1. Микропрепараты готовят путем помещения объектов в каплю воды на предметном стекле, тщательно расправляя их с помощью препаровальных игл
и накрывая покровным стеклом. Избыток воды удаляется фильтровальной бумагой.
2. Приготовленный препарат рассматривается вначале при малом (×8, ×20),
а затем при большом (×40, ×60, ×90 с иммерсией) увеличении микроскопа с осветителем. При использовании иммерсионной системы микроскопа на препарат наносят каплю кедрового масла и рассматривают без покровного стекла.
3. Рассматриваемые объекты зарисовываются и подписываются.
4. Узнать увеличение микроскопа, при котором рассматривается тот или иной объект, просто. Для этой цели необходимо умножить цифру, стоящую на объективе, на цифру, обозначенную на окуляре (эта цифра всегда со знаком ×). Например, при объективе 40 и окуляре ×10, микроскоп дает увеличение в 400 раз.
Техника выполнения биологического рисунка
Зарисовке ботанических объектов нужно уделять серьезное внимание, так как это не только способ оформления результатов наблюдения, но и метод эксперимента, позволяющий более детально изучить объект.
1. Рисунок должен быть четким, пропорциональным, правильно отражать результаты наблюдений, трактовку исследованных структур.
2. Схему строения таллома рисуют при малом, а детальное строение отдельных клеток при большом увеличении микроскопа.
3. Располагают рисунок с левой стороны листа.
4. На правую сторону выносят стрелки с цифрами и расшифровывают их
в подрисуночной подписи.
5. Рисунок должен быть крупным (не более двух на листе). Делают его простым карандашом.
Приложение 2
Методические рекомендации по гербаризации низших растений
Сбор, обработка и гербаризация водорослей
Водоросли можно собирать в любое время года, но лучше в весенние, летние и осенние месяцы. Различают водоросли, обитающие в воде и вне воды (на коре стволов деревьев, почве, влажных стенах, заборах, снегу, льду, у сточных труб
и т. д.). Под фитопланктоном в науке понимают группу микроскопических растений, которые обитают в воде. Большинство из них имеет специальные приспособления, чтобы держаться в воде во взвешенном состоянии (выделение слизи, газовые вакуоли, капли жира и т. д.).
Некоторые планктонные водоросли способны к передвижению при помощи жгутиков. Бентосные водоросли представлены нитчатками, которыми обрастают различные подводные предметы, и формами, обитающими на грунтах водоемов.
Тину можно собирать из воды с помощью палки с набитыми на ней несколькими гвоздями или с помощью «кошки», состоящей из крупного рыболовного крючка, грузила и прочной бечевки. Пробы ила, в которых обитает много видов водорослей, можно брать с помощью металлической ложки, предварительно отточив одни из ее краев.
Для сбора планктонных водорослей используется планктонная сетка. Она состоит из конусовидного сачка, изготовленного из специальной шелковой или другой тонкой и плотной ткани. Внизу к узкой части сачка прикрепляется металлическая или стеклянная воронка с резиновой трубкой и зажимом.
Аэрофильные водоросли, обитающие на коре стволов деревьев, можно собирать, срезая острым ножом тонкие кусочки коры.
Собранный материал этикетируется. На этикетках пишется дата и место сбора, отмечается характер водоема (чистый, загрязненный и т. д.). В сосудах с пробами должно быть достаточно воды и значительное количество водорослей для лучшей сохранности в живом состоянии. Хорошо сохраняется материал для дальнейших исследований в кристаллизаторах, покрытых стеклами. Многие водоросли таким способом сохраняются в лаборатории в живом состоянии довольно долго (пиннулярия, осциллятория и др.). Водоросли можно собирать и хранить в баночках емкостью 50 см3, бутылках и т. д. Если собранный материал необходимо сохранить продолжительный срок, его консервируют. Обычно для этого используют 40%-й формалин, разбавляя его в 10 раз. Банки с пробами после добавки формалина взбалтывают и плотно закрывают, хранят в темном шкафу.
Некоторые водоросли можно долгое время сохранять в сухом состоянии. Например, зеленые налеты со стволов деревьев, срезанные вместе с корой, помещают в коробки с этикетками. Гербарий можно сделать из нитчаток. Для этого зеленые или сине-зеленые нитчатки помещают в таз с водой, под них подводят лист белой плотной бумаги. Нити аккуратно расправляют препаровальной иглой,
а затем бумагу с водорослями вынимают из воды и высушивают на воздухе.
Для сохранения гербарных листов от пыли и порчи их помещают в целлофановые пакеты или кладут в конверты. В каждый конверт кладется один или
несколько гербарных листов с водорослями одного рода. На конверте делается соответствующая надпись.
Сбор, обработка и составление коллекций грибов
Коллекции грибов составляются для научного изучения, для краеведческого музея, где можно ознакомиться с микобиотой своего района, для демонстрации на занятиях в вузе и на уроках в школе. К сбору грибов студенты должны подготовить соответствующее снаряжение: корзинку, нож с широким лезвием для выкапывания гриба или срезания его с субстрата, бумагу, в которую отдельно заворачивается каждый вид гриба, и коробки, в которые помещаются плодовые тела зрелых (пылящих) гастеромицетов. Бумагу лучше заранее нарезать на куски размером 20×20 или 25×30 см. Можно свернуть ее в виде конвертов. Необходимы также дневник для описания маршрута и мест сбора отдельных видов грибов, особенностей собранных образцов, нарезанная бумага для этикеток, карандаш. Хорошо иметь линейку или ленту для измерения плодового тела и стандартную шкалу цветов для точного определения цвета грибов. Все это лучше делать на месте сбора.