Смекни!
smekni.com

Методические рекомендации мр 2639-10 (стр. 16 из 17)

- Механические дозаторы 20, 100, 200 и 1000 мм3;

- На дверях лаборатории, оборудовании, контейнерах и материалах устанавливается знак биологической опасности. Им также помечаются наноматериалы.

- Вход в лабораторию разрешается только тем лицам, чье присутствие предусмотрено программой исследований и утверждено руководителем лаборатории.

- Автоклав следует устанавливать в лаборатории.

- Поверхности стен, столов и потолков должны легко очищаться и деконтаминироваться.

- Режим и условия работы приборов, создающих опасность образования аэрозоля (вибромешалки, водоструйные насосы, лиофилизаторы, дозаторы и т.п.), организуются таким образом, чтобы свести к минимуму поступление частиц аэрозоля в воздух помещения.

- Должны использоваться боксы с ламинарным потоком воздуха или боксы с вытяжной вентиляцией во всех случаях, когда возможно образование аэрозоля с НЧ. Не допускается рециркуляция воздуха. Применяется правило "Работа вдвоем". Состояние воздуховодов и фильтров ежегодно проверяется работниками специальной ведомственной службы, что оформляется техническим актом.

- Использованные в опыте материалы, содержащие наночастицы корового белка, обеззараживаются.

- Непосредственно после завершения экспериментов рабочие поверхности боксов и другого оборудования обеззараживаются.

- Стеклянная посуда, которая употреблялась при анализах, перед повторным использованием должна стерилизоваться непосредственно в лаборатории или помещаться в прочные герметичные контейнеры до удаления из лаборатории; эти контейнеры и их содержимое следует стерилизовать при повторном применении.

- Вакуумные линии необходимо защищать фильтрами и ловушками для жидкости, которые периодически подвергаются техническому осмотру персоналом. Периодичность осмотра определяется руководителем исследований.

- Допускается проведение экспериментов, требующих физической защиты уровня Ф3, в лабораториях, где создан направленный поток воздуха, но устройство вытяжной вентиляции не соответствует полностью уровню Ф3.

- При работе с лиофилизованными материалами должны использоваться одноразовые перчатки из 100% нитрила с хорошей целостностью. Перчатки с удлиненным рукавом являются полезными для предотвращения загрязнения лаборатории, халата или костюма. Перчатки необходимо менять после использования наноматериалов или, если подозревается загрязнение. Хранить загрязненные перчатки необходимо в пластиковых пакетах или герметичных контейнерах в накопителе отходов вплоть до их утилизации. Следует тщательно мыть руки и предплечья после работы с наноматериалами. Обязательно использование одноразовых лабораторных халатов и хранение их в специально отведенных шкафах.

- Для защиты органов дыхания необходимо использовать респираторы противоаэрозольные с дополнительной защитой:

Респиратор BLS – 215 ГОСТ 12.4.041-89. 2-ая степень защиты

Респиратор BLS – 225. ГОСТ 12.4.041-89. 2-ая степень защиты

Респиратор BLS – 520A ГОСТ 12.4.041-89 3-я степень защиты

- Исключается пипетирование ртом. При работе необходимо использовать одноразовые наконечники для автоматических пипеток с аэрозольным барьером, при этом обязательно менять наконечники при переходе от одной пробы к другой.

- Использованные наконечники хранить в одноразовых герметичных контейнерах в накопителе отходов вплоть до их утилизации или сбрасывать в специальную емкость с 1Н раствором соляной кислоты.

Лаборатория должна иметь комплект для ликвидации случайной утечки, рассыпания и пролива наночастиц: огораживающие ленты, нитриловые перчатки, одноразовые респираторы, адсорбирующие материалы, салфетки, пластиковые мешки. Небольшие количества наноматериалов могут быть уничтожены с помощью мокрой очистки поверхностей салфетками из абсорбирующего материала. Рассыпанные лиофилизованные суспензии могут быть удалены с помощью пылесоса, специально оснащенного фильтром HEPA (High Efficiency Particle Absorbption) класса H 13 (эффективность задержания частиц размером около 0,06 микрон - 99,95%). Для обеспечения эффективной задержки наночастиц фильтр устанавливается на выпускном клапане в целях предотвращения рассеивания в воздухе лаборатории.

10.3. Выбор оптимального режима работы аппаратуры

Требования к анализируемым материалам:

- агрегатное состояние – жидкость. Для определения биогенных наноматериалов в воздушной среде, почве, тканях растений или животных объект необходимо перевести в жидкое состояние любым общепринятым методом, избегая при этом экстремальных значений температуры, рН и использования реагентов, способных вызвать денатурацию детектируемого вещества.

- минимальное содержание наноматериала на основе корового белка гепатита В в пробе - 2 нг/ см3.

- находящиеся в анализируемом растворе вещества не должны влиять на взаимодействие антитела с антигеном. Анализ всех образцов должен сопровождаться постановкой положительных и отрицательных контролей.

10.4. Расчёт, метрологическая характеристика и интерпретация результатов исследования.

10.4.1. Иммуноферментный анализ (ИФА)

Метод иммуноферментного анализа (ИФА) основан на высокой избирательности и специфичности иммунологических реакций “антиген-антитело”. Данный метод позволяет определить присутствие корового антигена гепатита В в исследуемом растворе и определить его концентрацию.

10.4.1. 1. Расчет и интерпретация результата

В качестве стандартов используются образцы корового антигена гепатита В с известной концентрацией в интервале от 1 до 50 нг/ см3. По полученным значениям строится калибровочная кривая. Калибровочная кривая определяет зависимость измеренного поглощения от количества белка в ячейке. Содержание корового антигена гепатита В в образцах вычисляется по полученной калибровочной кривой.

10.4.1. 2.Метрологическая характеристика метода

- Минимальное открываемое количество - 0,1 нг.

- Диапазон линейности стандартного графика - 2-100 нг/ см3.

- Приемлемый коэффициент вариации для анализа образца

а) по одному стандартному графику - не более 10%;

б) по разным стандартным графикам в разных сериях опытов - не более 12%.

- Воспроизводимость (сходимость результатов) - 9%

- Тест на открытие (проверка линейности анализа методом добавок) - 91%-108%

10.4.2. Денатурирующий белковый электрофорез в полиакриламидном геле

Данный метод дает возможность определения молекулярной массы исследуемых белков по их подвижности в денатурирующем полиакриламидном геле.

10.4.2.1. Расчет и интерпретация результата

Для определения молекулярной массы рекомбинантного корового антигена гепатита В в одну из ячеек ПААГ-геля наносится маркер, имеющий известные молекулярные массы. После проведения опыта положение полосы, соответствующей целевому продукту, сравнивается с положением полос маркера. Молекулярная масса исследуемого образца должна находиться в интервале полос маркера, соответствующим 15 – 20 кДа. Отсутствие на геле других видимых полос свидетельствует о гомогенности и чистоте препарата.

Приложение 1

(справочное)

Наименование и краткие характеристики аппаратуры, используемой при контроле содержания наноматериалов методом электронной микроскопии

Для выявления и идентификации наночастиц методом электронной микроскопии могут использоваться электронные микроскопы фирм Цейс (Zeiss, Германия) и Джеол (Jeol, Япония) из списка, приведенного ниже (по состоянию на начало 2010 г), а также электронные микроскопы других производителей с характеристиками, соответствующими требованиям п.6.1.1.

Электронные микроскопы фирм Цейс (Zeiss, Германия)

1. Просвечивающий электронный микроскоп, модель LEO 912AB. Ускоряющее напряжение 120 кВ, режим просвечивающей электронной микроскопии с разрешением 0,34 нм (по паспорту) и диапазоном увеличений до 80 до 500000, режим дифракции электронов, режим измерения спектров ХПЭЭ с разрешением 1,5 эВ, режим элементного картирования на основе СХПЭЭ, цифровая система регистрации изображений на основе ПЗС.

2. Просвечивающий электронный микроскоп, модели Libra 120 и Libra 120 Plus. Ускоряющее напряжение 120 кВ, режим просвечивающей электронной микроскопии с разрешением 0,34 нм (по паспорту) и диапазоном увеличений до 8 до 630 000, режим дифракции электронов, режим измерения спектров ХПЭЭ с разрешением 1,5 эВ, режим элементного картирования на основе СХПЭЭ, цифровая система регистрации изображений на основе ПЗС.

3. Просвечивающий электронный микроскоп, модели Libra 200 FE HR и Libra 200 FE HT. Ускоряющее напряжение 200 кВ, режим просвечивающей электронной микроскопии с разрешением 0,24 нм (по паспорту Libra 200 FE HR), 0,29 нм (по паспорту Libra 200 FE HТ) и диапазоном увеличений до 8 до 1 000 000, режим дифракции электронов, режим измерения спектров ХПЭЭ с разрешением 0,7 эВ, режим элементного картирования на основе СХПЭЭ, цифровая система регистрации изображений на основе ПЗС.

4. Просвечивающий электронный микроскоп, модели Libra 200 МС HR и Libra 200 МС HT. Ускоряющее напряжение 200 кВ, режим просвечивающей электронной микроскопии с разрешением 0,24 нм (по паспорту Libra 200 МС HR), 0,29 нм (по паспорту Libra 200 МС HТ) и диапазоном увеличений до 8 до 1 000 000, режим дифракции электронов, режим измерения спектров ХПЭЭ с разрешением 0,2 эВ, режим элементного картирования на основе СХПЭЭ, цифровая система регистрации изображений на основе ПЗС.

Электронные микроскопы фирмы ДЖЕОЛ (JEOL, Япония):

1. Просвечивающий электронный микроскоп, модель JEM-1230. Ускоряющее напряжение 120 кВ, режим просвечивающей электронной микроскопии с разрешением 0,38 нм (по паспорту) и диапазоном увеличений от 50 до 800 000, режим дифракции электронов, режим измерения спектров ХПЭЭ с разрешением 1,5 эВ, режим элементного картирования на основе СХПЭЭ, цифровая система регистрации изображений на основе ПЗС-камеры.

2. Просвечивающий электронный микроскоп, модель JEM-1400. Ускоряющее напряжение 120 кВ, режим просвечивающей электронной микроскопии с разрешением 0,38 нм (по паспорту) и диапазоном увеличений от 50 до 1200000, режим дифракции электронов, режим измерения спектров ХПЭЭ с разрешением 1,5 эВ, режим элементного картирования на основе СХПЭЭ, цифровая система регистрации изображений на основе ПЗС-камеры.